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猪用生物制品及相关猪源原辅材料中

  非洲猪瘟病毒核酸检测方法

1  适用范围

1.1猪用及采用猪源原辅材料制备的生物制品成品及半成品。

1.2猪源毒种。 

1.3 猪源细胞及相关制品生产用细胞。

1.4其他猪源原辅材料（如组织、血清
、胰酶衍生物等）。

2  取样和处理

2.1 疫苗

2.1.1  活疫苗  取至少2瓶样品，按瓶签注明头份用适宜稀释液分别稀释成10头份/0.2ml，等量混合，取混合液进行核酸提取。

2.1.2  灭活疫苗  取至少2瓶样品
，等量混合后进行以下处理
。

2.1.2.1 油佐剂灭活疫苗  取36 ml混合疫苗，加入正戊醇4.0 ml，充分振荡混合1分钟，2～8℃冰箱静置不少于60分钟，直至油相和水相分离。取水相进行核酸提取。

2.1.2.2 水性佐剂灭活疫苗

2.1.2.2.1铝胶佐剂灭活疫苗  取混合疫苗5.0 ml
，摇匀，加入0.25 g解离剂CPG-odn（人工合成的寡聚核苷酸）
，放入摇床（200 r/min）37℃解离1小时，5000 r/min离心10分钟
，取上清液进行核酸提取。

2.1.2.2.2其他水性佐剂灭活疫苗  直接取混合样品进行核酸提取
。

2.2 其他生物制品和半成品冻干类制品
，按活疫苗进行取样和处理；液体制品及半成品，取至少2份（瓶）样品，等量混合


，取混合液进行核酸提取。

2.3 猪源毒种  取至少2支毒种。冻干毒种，按冻干前体积复溶后等量混合，取混合液进行核酸提取；非冻干毒种，等量混合后直接取混合液进行核酸提取

。

2.4 猪源细胞  除另有规定外
，取至少2瓶细胞浓度不少于10^7.0个细胞/ml的细胞悬液进行核酸提取。

2.5 其他猪源原辅材料

2.5.1 猪组织  每种组织
，分别取样和处理。取不少于2.0 g组织，研磨后用5倍体积灭菌PBS悬浮，70℃灭活30分钟，4℃下以2000～3000 g离心10分钟，取上清液进行核酸提取

。

2.5.2 猪血清  每批血清取至少2个最小包装的样品，等量混合
，取混合液进行核酸提取
。

2.5.3 猪胰酶  干粉状胰酶，取至少2份样品，根据使用情况分别配制成不低于2.5%浓度的溶液，等量混合，取混合液进行核酸提取；液体胰酶
，取至少2个最小包装的样品
，等量混合，取混合液进行核酸提取
。

2.5.4 其他猪源衍生物  固体、液体或干粉状猪源衍生物，可分别按组织、血清或干粉状胰酶的方法进行取样和样品处理
。

3  核酸提取

3.1 试剂和器材

3.1.1 试剂  根据核酸提取方法确定
，如氯仿、异丙醇、无水乙醇


、0.1 mol/l 柠檬酸钠（含10%乙醇）、75%乙醇等。

3.1.2 仪器  核酸含量测定仪

；常温台式离心机
；旋涡振荡器；水浴锅；微量移液器1套（最大量程分别为10 µl、100 µl、200 µl
、1000 µl）。

3.1.3 耗材  1.5 ml带盖离心管、无菌吸头（0～10 µl、0～200 µl、100～1000 µl）
、一次性乳胶手套。

3.2  操作程序（TRIZOL法），也可以选择其他等效核酸提取方法提取样品中的DNA。

3.2.1 取样品250 µl
，加入750 µl Trizol，颠倒混匀，室温放置5分钟
。

3.2.2 加入200 µl氯仿，充分混匀，室温放置10 分钟，4℃下以12000 g离心15 分钟。

3.2.3 弃去上清液，加入220 µl无水乙醇，颠倒混合
，15～30℃放置2～3分钟
，2～8℃以2000 g离心5分钟，沉淀物为DNA
。

3.2.4 弃去上清液
，加入含10%乙醇的0.1 mol/l 柠檬酸钠750 µl洗涤DNA，15～30℃放置30分钟
，2～8℃以2000 g离心5分钟。重复一次

。

3.2.5 加入75%乙醇1.2 ml，重悬DNA沉淀
，15～30℃放置20分钟

，4℃2000 g离心5分钟。可重复一次
，充分洗涤DNA沉淀。

3.2.6 弃去上清液，敞开离心管管口
，在空气中干燥5～10分钟，加入30～50 μl的无核酸酶灭菌水溶解DNA
，－20℃以下保存备用。

3.3  注意事项

3.3.1核酸提取试剂具有腐蚀和强变性能力，应做好个人防护，佩戴手套

、口罩和护目镜
，防止液体飞溅到皮肤和眼睛。

3.3.2后续的核酸检测敏感性很高，要防止样品之间相互污染，最好使用带滤芯的枪头
，且每次吸取取液体时均需更换枪头
。

3.3.3为防止核苷酸降解，应避免核酸酶污染
，使用的耗材均需无核酸酶

。

3.3.4做好剩余样品的无害化处理及操作台面的消毒处理。剩余样品可通过高压灭菌或煮沸处理
，也可放在1%卫可或2%氢氧化钠消毒液中浸泡处理，操作台面使用1%卫可擦拭。

3.3.5提取后的DNA样品要用锡箔纸封存
，取样时应用枪头直接刺破锡箔纸取样，防止污染
。

4  检测

下列两种方法可任选其一。

4.1  实时荧光定量PCR检测法

4.1.1 试剂和器材

4.1.1.1 试剂

4.1.1.1.1 荧光定量PCR试剂  本操作中以Applied Biosesystems TaqMan Gene Expression Assays kit为例，也可选用其他荧光定量PCR试剂。

4.1.1.1.2 扩增引物及探针

扩增引物：

ASF-05-Zsak-1466F（10 µmol/ L）：5'-CCTCGGCGAGCGCTTTATCAC-3'

ASF-05-Zsak-1528R（10 µmol/ L）：5'-GGAAACTCATTCACCAAATCCTT-3'

探针ASF-05-Zsak-1486prob (10 µmol/ L)：5'-FAM-CGATGCAAGCTTTAT-MGB-3'

4.1.1.1.3  无核酸酶的灭菌水  PCR级别。

4.1.1.2  仪器  荧光定量PCR仪
；微量移液器1套（最大量程分别为10 µl
、100 µl、200 µl、1000 µl）。

4.1.1.3 耗材  1.5 ml带盖离心管、0.2 ml薄壁PCR管、荧光定量PCR 96孔板
、0.1 ml荧光PCR八连管、无菌吸头（0～10 µl
、0～200 µl、100～1000 µl）、一次性乳胶手套。

4.1.2  操作程序

4.1.2.1 样品DNA制备  按照前述方法进行核酸提取。

4.1.2.2 反应体系的配制  配制比样品数量至少多4个的反应体系，同时设置强阳性、弱阳性和阴性对照
。在强阳性和弱阳性对照反应管中分别加入含有非洲猪瘟P72基因的标准质粒DNA各3 µl，在阴性对照反应管中加入3µl无核酸酶灭菌水。每个PCR反应管中应包含以下成分：

4.1.2.3  反应程序  将所有待检样品和强阳性
、弱阳性、阴性对照反应管放在荧光定量PCR仪中
，按照以下程序进行扩增
：50℃2分钟
，95℃5分钟
，95℃15秒
，58℃退火延伸1分钟，45个循环（荧光信号收集在此阶段每次循环的退火延伸时进行）
。

4.1.2.4  结果判定

4.1.2.4.1  阈值设定  试验操作结束后
，确定Ct值
。Ct值为每个样品反应管内荧光信号到达设定阈值时所经历的循环数

。

阈值设定原则：根据仪器噪声情况进行调整
，以阈值线刚好超过阴性对照扩增曲线的最高点为准。

4.1.2.4.2  质控标准

对照组的检测结果应符合以下情况
，此次检测方为有效
：

阴性对照无Ct 值，且无扩增曲线。

强阳性对照的Ct 值应在18～22之间，并出现典型的扩增曲线
。弱阳性对照的Ct 值应在33～35之间
，并出现典型的扩增曲线
。

4.1.2.4.3  判定

阴性：无Ct值，且未出现扩增曲线
，判定为样品中无ASFV核酸
。

阳性：Ct值≤40，且出现典型的扩增曲线
，判定为样品中存在ASFV核酸
。

可疑

：Ct值>40，且出现典型扩增曲线，判定为可疑，应重检。重检后
，Ct值≤40且出现典型扩增曲线者判为阳性，其他情况均判定为阴性。

4.2  普通 PCR检测法

4.2.1  试剂和器材

4.2.1.1  试剂

4.2.1.1.1 PCR试剂  10×PCR缓冲液（含25 mmol/l  Mg²⁺）
，DNA扩增酶
，dNTP预混液
。

4.2.1.1.2扩增引物

primer PPA-1（10 μmol/L）：5'-AGTTATGGGAAACCCGACCC-3' (上游引物)
；

primer PPA-2（10 μmol/L）：5'- CCCTGAATCGGAGCATCCT-3' (下游引物)
。

4.2.1.1.3  DNA分子量标准品  DL500
。

4.2.1.1.4  TAE电泳缓冲液  配制方法见《电泳液标准配制流程》。

4.2.1.1.5  1%琼脂糖凝胶板  在100 ml 1×TAE缓冲液中加入1g琼脂糖
，加热融化

，加入5.0 μl (10 mg/ml)溴化乙锭，混匀，倒入水平放置的凝胶盘中
，胶板厚度达5.0 mm左右
。根据样品数量选用适宜的梳子

。待凝胶冷却凝固后拔出梳子(胶中形成加样孔)，放入电泳槽中
，加1×TAE缓冲液淹没胶面。

4.2.1.2 仪器  DNA扩增仪，稳压稳流电泳仪，水平电泳槽
，凝胶成相系统（或紫外透射仪）
，微量移液器1套。

4.2.1.3 耗材  1.5 ml带盖离心管、0.2 ml薄壁PCR管
、无菌吸头（0～10 µl、0～200 µl

、100～1000 µl）。

4.2.2 操作程序

4.2.2.1 样品DNA制备  按照前述方法进行核酸提取。

4.2.2.2 反应体系的配制  配制比样品数量至少多3个的反应体系
，同时设立阳性和阴性对照

。在阳性对照反应管中加入非洲猪瘟P72基因重组质粒2.0 µl
，在阴性对照反应管中加入2.0 µl无核酸酶灭菌水
。每个PCR反应管中应包含以下成分：

4.2.2.3  反应程序  将所有待检样品及阳性和阴性对照反应管放在PCR仪中
，按照以下程序进行扩增：94℃2分钟，94℃30秒，60℃30秒
，72℃30秒，35个循环
；72℃10分钟
。4℃保存

。

4.2.2.4  PCR扩增产物分析  取PCR扩增产物10 µl


，加6×加样缓冲液2.0 µl
，混匀
，用1.5%琼脂糖凝胶对混合物进行电泳分析，电压120V
，电流50 mA，电泳时间30分钟
。电泳结束后
，用凝胶成像系统拍照，记录检测结果
。

4.2.2.5 结果判定

4.2.2.5.1 质控标准

对照组的检测结果应符合以下情况

，此次检测方为有效：

阴性对照应不出现257bp的特异性条带
。

阳性对照应出现257bp的特异性条带。

4.2.2.5.2 判定

阳性
：待检样品出现与阳性对照大小一致的扩增条带，判定为非洲猪瘟病毒核酸阳性，扩增产物可通过DNA测序进一步确定基因型。

阴性：待检样品未出现与阳性对照大小一致的扩增条带，判定为非洲猪瘟病毒核酸阴性。

4.3  注意事项

4.3.1检测过程中应遵循PCR实验分区原则，即应区分试剂配制区
、样本处理区
、核酸扩增区。

4.3.2应避免在含有靶序列的区域中使用引物，防止污染靶序列。